banner

Блог

Jun 30, 2023

Машинное обучение и метагеномика выявили общие профили устойчивости к противомикробным препаратам на нескольких птицефермах и скотобойнях в Китае

Nature Food, том 4, страницы 707–720 (2023 г.) Процитировать эту статью

2195 Доступов

108 Альтметрика

Подробности о метриках

Китай является крупнейшим мировым потребителем противомикробных препаратов, и совершенствование методов надзора может помочь снизить распространение устойчивости к противомикробным препаратам (УПП). Здесь мы сообщаем о наблюдении за десятью крупными птицефермами и четырьмя связанными с ними скотобойнями в трех китайских провинциях в течение 2,5 лет. Используя подход интеллектуального анализа данных, основанный на машинном обучении, мы проанализировали 461 микробиом птиц, туш и окружающей среды, выявив 145 потенциально мобильных генов устойчивости к антибиотикам (ARG), общих для кур и окружающей среды на всех фермах. Основной набор из 233 ARG и 186 видов микробов, извлеченных из микробиома кишечника курицы, коррелирует с профилями AMR Escherichia coli, колонизирующих тот же кишечник, включая Arcobacter, Acinetobacter и Sphingobacterium, клинически значимые для человека, и 38 клинически значимых ARG. Температура и влажность в сараях также коррелировали с присутствием ARG. Мы раскрываем сложную сеть корреляций между окружающей средой, микробными сообществами и УПП, предлагая несколько путей улучшения надзора за УПП в животноводстве.

Использование противомикробных препаратов в птицеводстве в Китае в пять раз выше, чем в среднем по миру1. Использование антибиотиков, даже в низких дозах, изменяет и расширяет кишечный резистом у домашнего скота2, а микробное сообщество может формировать фенотипы устойчивости к противомикробным препаратам (УПП)3. Внешние события, такие как изменения в диете, температуре и стрессе4,5, могут привести к колонизации новых резидентных видов или передаче УПП между видами6. Температура, влажность, а также численность видов бактерий и наличие генов устойчивости к антибиотикам (ARG)7,8,9 могут влиять на бактериальную инфекцию у бройлеров10. Связь между условиями окружающей среды и УПП особенно актуальна для Китая и стран с низким и средним уровнем дохода (СНСД), где поддержание стабильных экологических условий в промышленном сельском хозяйстве может оказаться сложной задачей по сравнению со странами с высоким уровнем дохода11.

Эпиднадзор за УПП в сферах, не связанных со здравоохранением, не получил широкого распространения12, но является ключом к пониманию того, как системы производства продуктов питания способствуют отбору и распространению бактерий, устойчивых к антибиотикам (БРА) и АРГ. Машинное обучение (МО) и анализ больших данных предлагают инструменты для развития точного птицеводства13,14. Культуральные подходы, включающие полногеномное секвенирование (WGS) отдельных патогенов, тестирование чувствительности к антибиотикам и методы ML, являются эффективными предикторами геномных характеристик, связанных с AMR, как для изолятов Escherichia coli15,16,17,18, так и для других бактерий19,20,21,22 ,23,24. Однако подходы к надзору, ориентированные исключительно на WGS отдельных патогенов, могут не отражать разнообразие микробных сообществ и резистомов в животноводстве, и данные ARG могут быть упущены25. В недавнем исследовании, подтверждающем концепцию, мы заметили, что несколько ARG, присутствующие в резистоме куриных фекалий, коррелируют с профилями устойчивости/чувствительности изолятов E. coli, культивированных из тех же образцов26.

В этом исследовании мы разработали эталонный метод метагеномного надзора, ориентированного на китайское животноводство, где эпиднадзор за УПП особенно сложен, используя подход, учитывающий нехватку лабораторных ресурсов, обычно наблюдаемую в Китае и странах с низким и средним уровнем дохода27,28. Мы использовали E. coli в качестве индикатора УПП в более широком контексте микробного сообщества, населяющего кишечник цыплят. Чтобы охватить более широкий контекст, мы изучили влияние на микробиомы окружающей и связанной с ними среды фермы, температуры и влажности в коровнике, а также приняли протоколы применения противомикробных препаратов.

Биологические образцы были собраны на десяти крупных коммерческих птицефабриках (см. Методы, Дополнительную информацию, Дополнительный рисунок 1 и Дополнительные таблицы 1 и 2). Микробные сообщества и ARG различались по источникам на фермах, а также между фермами и скотобойнями (дополнительная информация, дополнительные рисунки 2–5 и дополнительные таблицы 3–5). Поскольку подвижность генов может влиять на присутствие ARG в разных источниках, а также из-за потенциальной важности мобильных генетических элементов (MGE) в разработке эффективных систем наблюдения29, мы искали ARG, которые находились в пределах 5 килобаз (кб) от MGE26, и рассматривали эти MGE- Комбинации ARG потенциально могут быть мобильными ARG. Всего была обнаружена 661 различная комбинация MGE-ARG (потенциально мобильные ARG), включающая 195 уникальных ARG (дополнительная таблица 6). Из них 75 ARG (38%) были обнаружены только в одной комбинации MGE-ARG, а остальные 120 (62%) были обнаружены в множественных комбинациях (от 2 до 22; рис. 1а). Более половины (56%) из 661 потенциально мобильного ARG присутствовали более чем в одном источнике (рис. 1b) с тремя комбинациями MGE-ARG (IS1216-poxtA, IS15-APH(3')-Ia и ISCfr1-AAC( 3)-IIг) присутствует во всех источниках, кроме перьев. Куриные фекалии имели наибольшее количество потенциально мобильных ARG, но также и наибольшую дисперсию (рис. 1c). Перья и пол сарая также содержали множество потенциально мобильных ARG, среднее количество которых статистически эквивалентно фекалиям (с поправкой на тест Данна P > 0,05). Почва, трупы, технологическая линия и сточные воды, как правило, имели меньшее количество потенциально мобильных моделей ARG на образец, причем эти количества значительно отличались (с поправкой на тест Данна P <0,01) от фекалий и перьев, но не друг от друга. В общей сложности на всех 10 фермах у птиц и источников окружающей среды на одной ферме было обнаружено 145 различных комбинаций MGE-ARG, причем некоторые из них появлялись на нескольких фермах. Из них 46 содержали клинически значимые ARG30 (рис. 1d). Примечательно, что мы обнаружили blaNDM-5 в куриных фекалиях, перьях и образцах пола коровников. Этот ген обычно обнаруживается в плазмиде IncX3, которая может распространяться среди людей, животных, продуктов питания и окружающей среды31, хотя мы не подтвердили присутствие плазмиды в наших данных метагеномного секвенирования короткого считывания (MGS). Другой важный клинически значимый ген, qnrS1, был обнаружен в куриных фекалиях, перьях, полу коровника и образцах сточных вод. Известно, что этот плазмидно-опосредованный ген устойчивости к хинолонам присутствует в цепочке поставок кур и способен передаваться различным бактериям32.

0.90./p>2,000 bp) were mapped to single assemblies and co-assemblies using Burrows–Wheeler Aligner–Maximal Exact Match (BWA-MEM v2-2.1)80 and SAMtools (v1.9)77 to produce the Binary Alignment Map (BAM) files. METABAT2 (v2.15)81 was used obtain the depth of coverage. The taxonomic classification and composition (relative species abundances) of the metagenome reads were profiled using MetaPhlAn (v3.0)82 with Bowtie 2 (v2.3.4.1)76 using the default settings –bowtie2out–input_type fastq. Nonmetric multidimensional scaling (NMDS) of the relative species abundance was performed in R (v3.6.2) using the vegan83 package with Bray–Curtis dissimilarity. Analysis of variance was performed in R using PERMANOVA from the vegan package83 with pairwise testing using the pairwise adonis function84 with Holm correction for multiple comparisons. Relative abundances were visually analysed by combining violin plots and categorical scatter plots, and differences were assessed by Wilcoxon rank sum test with Holm correction (adjusted P = 0.05)./p>500 bp) in each assembly were searched for ARGs and MGEs by a BLASTn search against the CARD61 and ISfinder (https://isfinder.biotoul.fr/) databases using an identity threshold of 95% and coverage threshold of 95% to prevent false positives and variant uncertainty88. The distance between an ARG and MGE was calculated from the positions of the ARG and MGE in the contig26. ARG-carrying contigs with a distance of more than 5 kb between ARG and MGE were discarded68,89,90,91, with the remaining contigs classed as potentially mobile ARGs. Contigs were annotated using Prokka (v1.14.6)92. Potentially mobile ARG patterns found in only a single sample were discounted in the analysis. ARGs were further classified as clinically important if the ARG was included in the Risk I category (clinically important ARGs dataset) according to Zhang et al.30. These genes were classed as Risk I if they were (1) present in human-associated environments, (2) potentially mobile genes and (3) present in ESKAPE pathogens (Enterococcus faecium, Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa and Enterobacter species). The structures of the potentially mobile ARG patterns (MGE type, ARG carried, MGE carried, sample source, farm, number of samples carrying potentially mobile ARG and distance) are summarized in Supplementary Table 8. For ISAba125–blaNDM-1, the gene structure was visualized using EasyFig93./p> 0.9 were considered./p>

ДЕЛИТЬСЯ